ກິນ. Chudinov, V.A. Platonov, A.V. Alexandrova, S.N. Elansky
ມັນໄດ້ຖືກສະແດງໃຫ້ເຫັນເມື່ອບໍ່ດົນມານີ້ວ່າເຫັດ aslyycete Ilyonectria crassa ແມ່ນມີຄວາມສາມາດໃນການຕິດເຊື້ອຫົວມັນຕົ້ນ. ວຽກນີ້ແມ່ນ ທຳ ອິດທີ່ວິເຄາະຄຸນລັກສະນະທາງຊີວະພາບແລະການຕໍ່ຕ້ານກັບເຊື້ອເຫັດບາງຊະນິດຂອງສາຍພັນ I. crassa strain ແຍກຈາກມັນຕົ້ນ. ລຳ ດັບຂອງຂົງເຂດສະເພາະຂອງຊະນິດພັນຂອງສາຍພັນ“ ມັນຕົ້ນ” ແມ່ນກົງກັນກັບບັນດາເຊື້ອທີ່ໄດ້ຮັບກ່ອນ ໜ້າ ນີ້ ສຳ ລັບເຊື້ອເຫັດທີ່ແຍກອອກຈາກຮາກຂອງ daffodil, ໂສມ, ຂີ້ເຖົ່າແລະຕົ້ນເຜິ້ງ, ດອກບົວແລະໃບ tulip. ປາກົດຂື້ນ, ພືດປ່າແລະສວນຫລາຍແຫ່ງສາມາດເປັນສະຫງວນຂອງ I. crassa. ການຄົ້ນຄວ້າພົບວ່າ ໝາກ ເລັ່ນແລະມັນຕົ້ນໄດ້ຕິດເຊື້ອແຕ່ບໍ່ໄດ້ຕິດເຊື້ອ ໝາກ ເລັ່ນທັງ ໝົດ ແລະຫົວມັນຕົ້ນ. ນີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ I. crassa ແມ່ນແມ່ກາຝາກທີ່ເປັນບາດແຜ. ການປະເມີນຄວາມຕ້ານທານກັບ fludioxonil, difenoconazole ແລະ azoxystrobin ໃນຂະ ໜາດ ກາງຂອງສານອາຫານໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງປະສິດທິພາບສູງຂອງຢາເຫຼົ່ານີ້.
ດັດຊະນີ EC50 (ຄວາມເຂັ້ມຂອງ fungicide, ເຊິ່ງຊ້າລົງ 2 ເທົ່າຂອງອັດຕາການເຕີບໂຕຂອງ radial ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບການຄວບຄຸມທີ່ບໍ່ແມ່ນ fungicide) ແມ່ນເທົ່າກັບ 0.4; 7.4 ແລະ 4 mg / l ຕາມ ລຳ ດັບ. ຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງການພັດທະນາຂອງພະຍາດທີ່ເກີດຈາກ I. crassa ຄວນ ຄຳ ນຶງເຖິງເມື່ອການປະເມີນ phytopathological ກ່ຽວກັບຫົວມັນຕົ້ນແລະການພັດທະນາມາດຕະການປ້ອງກັນພືດ.
ການພັດທະນາຂອງຈຸລິນຊີ phytopathogenic ເຮັດໃຫ້ເກີດການສູນເສຍສູງໃນທຸກຂັ້ນຕອນຂອງການປູກແລະເກັບມັນຕົ້ນ. ເມື່ອວາງແຜນມາດຕະການປ້ອງກັນ, ຕາມກົດລະບຽບ, ເຊື້ອພະຍາດທີ່ຮູ້ຈັກກັນດີແມ່ນໄດ້ ຄຳ ນຶງເຖິງເຊັ່ນວ່າຊະນິດຂອງເຊື້ອສາຍພັນທຸ ກຳ ພືດພັນພືດ, Fusarium, Phoma, Helminthosporium, Colletotrichum, Phytophthora, ແລະອື່ນໆ. ຊີວະວິທະຍາຂອງພວກເຂົາຖືກສຶກສາບໍ່ດີ, ປະສິດທິຜົນຂອງຢາຂ້າເຊື້ອໂຣກທີ່ໃຊ້ໃນມັນຕົ້ນກ່ຽວຂ້ອງກັບພວກມັນແມ່ນບໍ່ຮູ້, ວິທີການວິນິດໄສຍັງບໍ່ທັນໄດ້ຖືກພັດທະນາ. ດ້ວຍການພັດທະນາມວນຊົນ, ພວກມັນມີຄວາມສາມາດສ້າງຄວາມເສຍຫາຍທີ່ ສຳ ຄັນຕໍ່ການປູກມັນຕົ້ນ. ໜຶ່ງ ໃນຈຸລິນຊີເຫຼົ່ານີ້ແມ່ນເຊື້ອເຫັດ ascomycete Ilyonectria crassa (Wollenw.) A. Cabral & Crous, ຖືກຄົ້ນພົບຄັ້ງ ທຳ ອິດໂດຍຜູ້ຂຽນກ່ຽວກັບຫົວມັນຕົ້ນ (Chudinova et al., 2019).
ຜົນງານນີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນຜົນຂອງການວິເຄາະຂອງສາຍພັນ I. crassa ເມື່ອຍຈາກຫົວມັນຕົ້ນ. morphology ຂອງອານານິຄົມແລະໂຄງສ້າງ mycelial ຂອງ I. crassa, ລໍາດັບ nucleotide ຂອງຂົງເຂດ DNA ໂດຍສະເພາະຂອງຊະນິດພັນ, ໄວຣັດຕໍ່ມັນຕົ້ນແລະຫມາກເລັ່ນ, ແລະການຕໍ່ຕ້ານກັບເຊື້ອເຫັດທີ່ໄດ້ຮັບຄວາມນິຍົມບາງຢ່າງໄດ້ຖືກສຶກສາ.
ວັດສະດຸແລະວິທີການ
ພວກເຮົາໄດ້ ນຳ ໃຊ້ສາຍພັນ I. crassa 18KSuPT2 ທີ່ໂດດດ່ຽວໃນປີ 2018 ຈາກຫົວມັນຕົ້ນທີ່ຕິດເຊື້ອທີ່ປູກຢູ່ໃນຂົງເຂດ Kostroma. ຫົວໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຈາກປະເພດການເນົ່າເປື່ອຍທີ່ແຫ້ງທີ່ມີຢູ່ຕາມໂກນປົກຄຸມດ້ວຍ mycelium ສີນ້ ຳ ຕານອ່ອນ. ການໃຊ້ເຂັມຂັດທີ່ບໍ່ເປັນລະບຽບ, mycelium ເຊື້ອເຫັດໄດ້ຖືກໂອນເຂົ້າໄປໃນຈານ Petri ທີ່ມີຂະ ໜາດ ກາງ agar (ເບຍ wort 10%, agar 1.5%, penicillin 1000 U / ml). ແຜ່ນດັ່ງກ່າວໄດ້ຖືກອົບໃນບ່ອນມືດໃນອຸນຫະພູມ 24 ° C.
ກ້ອງຈຸລະທັດແສງ Leica DM2500 ທີ່ມີກ້ອງດິຈິຕອນ ICC50 HD ແລະກ້ອງຈຸລະທັດກ້ອງສ່ອງທາງໄກ Leica M80 ພ້ອມດ້ວຍກ້ອງດິຈິຕອນ IC80HD (Leica micystems, ເຢຍລະມັນ) ໄດ້ຖືກ ນຳ ໃຊ້ເພື່ອຖ່າຍຮູບ, ປະເມີນຂະ ໜາດ ແລະໂມເລກຸນຂອງ spores ແລະອະໄວຍະວະ spore.
ເພື່ອແຍກ DNA, mycelium ເຊື້ອເຫັດໄດ້ຖືກປູກເປັນເມັດຖົ່ວແຫຼວ, ຈາກນັ້ນແຊ່ແຂງໃນໄນໂຕຣເຈນທາດແຫຼວ, ເຮັດໃຫ້ເປັນເອກະພາບ, ແຊ່ໃນ CTAB buffer, ເຮັດໃຫ້ບໍລິສຸດດ້ວຍ chloroform, ແລະລ້າງ 2 ຄັ້ງດ້ວຍເຫຼົ້າ 70%.
ວິທີການສະກັດເອົາ DNA ໄດ້ຖືກອະທິບາຍໄວ້ໃນລາຍລະອຽດໃນບົດຂຽນໂດຍ Kutuzova et al. (ປີ 2017).
ເພື່ອ ກຳ ນົດຊະນິດພັນໂດຍວິທີການໂມເລກຸນແລະປຽບທຽບກັບສາຍພັນອື່ນໆທີ່ຮູ້ກັນ, ສາຍພັນ crassa, PCR ໄດ້ຖືກປະຕິບັດດ້ວຍ primers ທີ່ອະນຸຍາດໃຫ້ຂະຫຍາຍພື້ນທີ່ຂອງ DNA ໂດຍສະເພາະຂອງຊະນິດພັນ: ITS1-5,8S-ITS2 (primers ITS5 / ITS4, White et al., 1990), ເຂດ gene -tubulin (Bt2a / Bt2b, Glass, Donaldson, 1995) ແລະປັດໄຈການແປຍາວ1α (tef1α) (ຕົ້ນສະບັບ EF1-728F / EF1-986R, Carbone ແລະ Kohn, 1999). ເສັ້ນແອມຂອງຄວາມຍາວທີ່ຕ້ອງການໄດ້ຖືກສະກັດຈາກເຈນໂດຍໃຊ້ຊຸດ Evrogen CleanUp. ບັນດາຂົງເຂດທີ່ຂະຫຍາຍໄດ້ຖືກຈັດລຽງໂດຍໃຊ້BigDye® Terminator v3.1 ຊຸດ ລຳ ດັບວົງຈອນ (Applied Biosystems, CA, USA) ກ່ຽວກັບລະບົບຊີວະພາບທີ່ ນຳ ໃຊ້ໂດຍອັດຕະໂນມັດ 3730 xl ແບບອັດຕະໂນມັດ (Applied Biosystems, CA, USA). ລໍາດັບ nucleotide ທີ່ໄດ້ຮັບຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອຄົ້ນຫາການຈັບຄູ່ໃນຖານຂໍ້ມູນ GenBank ຂອງສູນຂໍ້ມູນຂ່າວສານດ້ານຊີວະວິທະຍາແຫ່ງຊາດສະຫະລັດ (NCBI). ການວິເຄາະ phylogenetic ໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ໂປແກຼມ MEGA 6 (Tamura et al., 2013).
ການ ກຳ ນົດອາການໄວຣັດໄດ້ຖືກ ດຳ ເນີນໄປດ້ວຍ ໝາກ ໄມ້ຂຽວທັງ ໝົດ ຂອງ ໝາກ ເລັ່ນທີ່ມີ ໝາກ ໄມ້ໃຫຍ່ (ແນວພັນ Dubrava) ແລະຫົວມັນຕົ້ນ (ຫຼາກຫຼາຍຊະນິດ). ນອກຈາກນັ້ນ, ເພື່ອ ຈຳ ລອງ ໝາກ ໄມ້ແລະຫົວທີ່ຖືກ ທຳ ລາຍ, ພວກເຮົາໄດ້ ນຳ ໃຊ້ ໝາກ ໄມ້ແລະຫົວດຽວກັນ. ສ່ວນຫົວຂອງຫົວແມ່ນຖືກຈັດໃສ່ໃນຫ້ອງທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມ, ເຊິ່ງແມ່ນຖ້ວຍ Petri ທີ່ມີເຈ້ຍກັ່ນຕອງຊຸ່ມຢູ່ທາງລຸ່ມ. ແຜ່ນສະໄລ້ຖືກວາງຢູ່ເທິງເຈ້ຍ, ເຊິ່ງໃນທາງກັບກັນ, ຊອຍຫົວຫຼື ໝາກ ໄມ້ຖືກວາງໄວ້. ຫົວແລະ ໝາກ ໄມ້ທັງ ໝົດ ກໍ່ຖືກບັນຈຸຢູ່ໃນຖັງທີ່ມີເຈ້ຍກອງທີ່ຊຸ່ມຢູ່ທາງລຸ່ມ. ຢູ່ໃນໃຈກາງຂອງສ່ວນທີ່ເຫຼືອ (ຫຼືຢູ່ດ້ານໃນຂອງຫົວຫຼື ໝາກ ໄມ້), ຊິ້ນສ່ວນຂະ ໜາດ ໃຫຍ່ (5 × 5 ມມ) ທີ່ມີສານຍັບຍັ້ງເຊື້ອເຫັດໄດ້ຖືກວາງລົງຫຼັງຈາກປູກໄດ້ 5 ວັນ.
ການປະເມີນຄວາມຕ້ານທານຂອງສາຍພັນຂອງເຊື້ອເຫັດກັບ fungicides ໄດ້ຖືກປະຕິບັດໃນສະພາບການຫ້ອງທົດລອງກ່ຽວກັບຂະ ໜາດ ກາງຂອງທາດອາຫານທີ່ຂາດສານອາຫານ. ພວກເຮົາໄດ້ສຶກສາຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ຢາຕ້ານເຊື້ອເຫັດ Maxim, KS (fludioxonil ສ່ວນປະກອບຢ່າງຫ້າວຫັນ, 25 g / l), Quadris, KS (azoxystrobin 250 g / l), Scor, EC (difenoconazole 250 g / l) (ລາຍການຂອງລັດ ... , 2020). ການປະເມີນຜົນໄດ້ຖືກປະຕິບັດຢູ່ໃນຖ້ວຍ Petri ກ່ຽວກັບ wort-agar ຂະຫນາດກາງພ້ອມກັບການເພີ່ມຂອງຢາທີ່ໄດ້ສຶກສາໃນຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງສານທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວ 0.1; ຫນຶ່ງ; 1 ppm (mg / L) (ສຳ ລັບ fludioxonil ແລະ difenoconazole), 10; ສິບ; 1 ppm (ສຳ ລັບ azoxystrobin) ແລະໃນສື່ທີ່ບໍ່ມີ fungicide (ຄວບຄຸມ). ຢາຂ້າເຊື້ອໂລກໄດ້ຖືກຕື່ມໃສ່ນ້ ຳ ມັນທີ່ລະລາຍແລະເຮັດໃຫ້ເຢັນລົງໃນຂະ ໜາດ ກາງ 10 ° C, ຫຼັງຈາກນັ້ນເຄື່ອງຂະ ໜາດ ນ້ອຍລົງໃສ່ຖ້ວຍ Petri. ທ່ອນ agar ທີ່ມີ mycelium ເຊື້ອເຫັດໄດ້ຖືກຈັດໃສ່ໃນໃຈກາງຂອງອາຫານ Petri ແລະວັດທະນະ ທຳ ໃນອຸນຫະພູມ 100 ° C ໃນເວລາມືດ ຫຼັງຈາກ 60 ວັນຂອງການຈູດ, ເສັ້ນຜ່າສູນກາງຂອງອານານິຄົມໄດ້ຖືກວັດແທກເປັນສອງທິດທາງເຊິ່ງກັນແລະກັນ; ຜົນໄດ້ຮັບຂອງການວັດແທກ ສຳ ລັບອານານິຄົມແຕ່ລະແຫ່ງແມ່ນໄດ້ສະເລ່ຍ. ການທົດລອງໄດ້ຖືກ ດຳ ເນີນເປັນ triplicate. ອີງຕາມຜົນຂອງການວິເຄາະ, EC24 ໄດ້ຖືກຄິດໄລ່, ເທົ່າກັບຄວາມເຂັ້ມຂອງ fungicide, ເຊິ່ງຫຼຸດລົງອັດຕາການເຕີບໂຕຂອງ radial ຂອງອານານິຄົມທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບການຄວບຄຸມ fungicidal.
ຜົນໄດ້ຮັບແລະການສົນທະນາ
ກ່ຽວກັບຖ້ວຍ petri ທີ່ມີ wort agar, ເຊື້ອເຫັດໄດ້ສ້າງຕັ້ງອານານິຄົມດ້ວຍ mycelium flocculent ສີຂາວ. ຂະຫນາດກາງພາຍໃຕ້ mycelium ໄດ້ປ່ຽນເປັນສີແດງສີນ້ ຳ ຕານ. ເມື່ອເວລາກາງແຫ້ງແຫ້ງ, ເຊື້ອເຫັດໄດ້ສ້າງເປັນຊະນິດຂອງສອງຊະນິດທີ່ຢູ່ໃນເສັ້ນດ່ຽວແລະລວມຢູ່ໃນ sporodochia ຂະ ໜາດ ນ້ອຍ. Macroconidia ແມ່ນຍາວ, ເປັນຮູບທໍ່ກົມ, ມີ ໜຶ່ງ ຫາສາມເຊັດ, ຄວາມຍາວສະເລ່ຍ 27.2 µm ມີລະດັບຂອງຄຸນຄ່າຈາກ 23.2 ເຖິງ 32.2 µm, ຄວາມກວ້າງ - ສູງເຖິງ 4.9 µm (ຮູບ 1). ຄວາມຍາວສະເລ່ຍຂອງ microconidia ແມ່ນ 14.3 µm ທີ່ມີລະດັບຂອງຄຸນຄ່າຈາກ 10.3 ເຖິງ 18.1 µm, ຄວາມກວ້າງແມ່ນສູງເຖິງ 4.0 µm. ລັກສະນະມະຫາພາກແລະຈຸລະພາກທັງສອງ ເໝາະ ສົມກັບລະດັບຂອງການປ່ຽນແປງຂອງຊະນິດພັນ Ilyonectria crassa (Cabral et al., 2012).
ລໍາດັບຂອງຂົງເຂດ DNA ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບຊະນິດພັນ (ITS, b-tubulin, TEF 1α) ກົງກັນຢ່າງສິ້ນເຊີງກັບລໍາດັບຂອງສາຍພັນສາຍພັນສາຍພັນ I. crassa ທີ່ພວກເຮົາໄດ້ສຶກສາກ່ອນ ໜ້າ ນີ້ (Chudinova et al., 2019, ຕາຕະລາງ 1). ເພື່ອສຶກສາຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງ I. crassa ໃນຂົງເຂດອື່ນແລະວິເຄາະຄວາມກວ້າງຂອງວັດທະນະ ທຳ ທີ່ຖືກກະທົບ, ລຳ ດັບ DNA ຄ້າຍຄືກັນໃນຖານຂໍ້ມູນຂອງ GenBank ໄດ້ຖືກວິເຄາະ (ຕາຕະລາງ 1). ການຊ້ອນກັນແມ່ນ 86 ເຖິງ 100%. ລຳ ດັບຂອງທັງສາມຂົງເຂດ DNA ຂອງ“ ມັນຕົ້ນ” I. ສາຍພັນ crassa ແມ່ນຄ້າຍຄືກັນກັບສາຍພັນສາຍພັນທີ່ແຍກອອກຈາກຫລອດດອກໄຟແລະຕົ້ນແຄໃນປະເທດເນເທີແລນແລະຈາກຮາກ ginseng ໃນປະເທດການາດາ. ພວກເຮົາລົ້ມເຫລວໃນການຊອກຫາສາຍພັນ I. ສາຍພັນ crassa ອື່ນໆທີ່ມີສາມການວິເຄາະທີ່ຄ້າຍຄືກັນໃນຖານຂໍ້ມູນເປີດ. ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ການວິເຄາະກ່ຽວກັບລະດັບ ITS ທີ່ຝາກແລະ b-tubulin ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າມີຂອງ I. crassa ຢູ່ໃບ tulip ໃນອັງກິດ. ເຊື້ອລາທີ່ມີລໍາດັບ ITS ທີ່ຄ້າຍຄືກັນໄດ້ຖືກກໍານົດໃນການວິເຄາະ mycobiota ຂອງຮາກ aspen ໃນປະເທດການາດາແລະຮາກເຜິ້ງໃນອິຕາລີ, ຫົວມັນຕົ້ນໃນປະເທດ Saudi Arabia (ຕາຕະລາງ 1). ຜົນຂອງການສຶກສານີ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ I. crassa ມີການກະຈາຍທົ່ວໂລກແລະມີຄວາມສາມາດໃນການຕິດເຊື້ອຊະນິດພັນພືດຕ່າງໆ.
ເມື່ອ ກຳ ນົດເຊື້ອພະຍາດໃນ ໝາກ ເລັ່ນແລະມັນຝະລັ່ງໃນວັນທີ 5, ເສັ້ນຜ່າສູນກາງຂອງແຜໄດ້ເຖິງ 1.5 ຊມ, ສາຍພັນທີ່ຖືກສືບສວນບໍ່ໄດ້ຕິດເຊື້ອ ໝາກ ເລັ່ນທັງ ໝົດ ແລະຫົວມັນຕົ້ນ. ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ກາບດອກໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຕໍ່ ໝາກ ເລັ່ນ. ເພື່ອຍົກເວັ້ນຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງການປົນເປື້ອນຈາກ mycelium ທີ່ພັດທະນາໄປເທິງຫົວມັນຝະລັ່ງ, ການແຍກເຊື້ອເຫັດແມ່ນແຍກອອກເປັນວັດທະນະ ທຳ ບໍລິສຸດ. ມັນແມ່ນຄ້າຍຄືກັນກັບສາຍພັນຂອງພໍ່ແມ່. ປາກົດຂື້ນ, I. crassa ແມ່ນແມ່ກາຝາກບາດແຜ.
ການບົວລະບັດຮັກສາກ່ອນການປູກຫົວພັນທີ່ມີ fungicides ຊ່ວຍຫຼຸດການພັດທະນາຂອງພະຍາດໃນພືດໃນລະດູການປູກ. ສຳ ລັບການຄັດເລືອກຢາຂ້າແມງໄມ້ທີ່ມີປະສິດຕິຜົນ, ມັນເປັນສິ່ງ ສຳ ຄັນທີ່ຈະປະເມີນວ່າຊະນິດໃດມີປະສິດຕິຜົນຕໍ່ກັບ I. сrassa. ວຽກງານດັ່ງກ່າວໄດ້ສຶກສາກ່ຽວກັບສານທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວທີ່ແຜ່ຫຼາຍຂອງ fungicides - fludioxonil, azoxystrobin, difenoconazole. Fludioxonil ແມ່ນລວມຢູ່ໃນຫຼາຍໆປະສົມທີ່ໃຊ້ ສຳ ລັບການນຸ່ງແລະການໃສ່ຫົວເມັດພັນກ່ອນທີ່ຈະປູກ. Fludioxonil (Maxim) ຍັງຖືກ ນຳ ໃຊ້ເພື່ອຮັກສາຫົວແນວພັນກ່ອນທີ່ຈະເກັບຮັກສາມັນ. Difenoconazole ແລະ azoxystrobin ຍັງລວມຢູ່ໃນຫຼາຍໆການກະກຽມທີ່ໃຊ້ ສຳ ລັບການປຸງແຕ່ງວັດສະດຸແກ່ນພັນ, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບການກະກຽມທີ່ມີຈຸດປະສົງໃນການປຸງແຕ່ງພືດພັນ (ລາຍການຂອງລັດ ... , 2020).
ອັດຕາການເຕີບໂຕຂອງ I. crassa ໄດ້ຖືກສຶກສາກ່ຽວກັບສື່ຕ່າງໆ (ຮູບ 2) ດ້ວຍຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງສານທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວທີ່ແຕກຕ່າງກັນ: fludioxonil (EC50 = 0.4 ppm), azoxystrobin (EC50 = 4 ppm), ແລະ difenoconazole (EC50 = 7.4 ppm) (ຕາຕະລາງ 2). ການກະກຽມເຫຼົ່ານີ້ສາມາດຖືວ່າມີປະສິດຕິຜົນສູງຕໍ່ກັບ I. crassa, ເນື່ອງຈາກວ່າ EC50 ຂອງພວກມັນແມ່ນຕໍ່າກ່ວາທີ່ເຂັ້ມຂົ້ນຂອງການກະກຽມໃນນ້ ຳ ທີ່ເຮັດວຽກທີ່ໃຊ້ໃນການຮັກສາຫົວ. ອີງຕາມລາຍການຂອງລັດ ... (ປີ 2020), ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ fludioxonil ໃນທາດແຫຼວ ສຳ ລັບປິ່ນປົວຫົວມັນຝະລັ່ງແມ່ນມາຈາກ 500 ເຖິງ 1000 ppm, azoxystrobin (ໃນທາດແຫຼວ ສຳ ລັບການຮັກສາທາງລຸ່ມຂອງຂີ້ເຫຍື່ອ) - 3750-9375 ppm, difenoconazole (ໃນທາດແຫຼວ ສຳ ລັບປິ່ນປົວພືດພັນ) - 187.5 625 ppm.
ຕາຕະລາງ 1. ຄວາມຄ້າຍຄືກັນຂອງ ລຳ ດັບຂອງສາຍພັນສະເພາະຂອງສາຍພັນ 18KSuPT2 ແລະສາຍພັນ crassa Ilyonectria ທີ່ມີຢູ່ໃນຖານຂໍ້ມູນ Genbank
ເມື່ອຍ | ໂຮງງານເຈົ້າພາບ, ສະຖານທີ່ແຫ່ງການຂັບໄລ່ | ຕົວເລກ ລຳ ດັບທີ່ຝາກຢູ່ GenBank, ເປີເຊັນຂອງຄວາມຄ້າຍຄືກັນ | ການເຊື່ອມຕໍ່ | ||
ໄອ | tub-tubulin | TEF 1α | |||
17KSPT1 ແລະ 18KSuPT2 | ຫົວມັນຕົ້ນ, ພາກພື້ນ Kostroma | MH818326 | MH822872 | MK281307 | Chudinova et al., 2019, ວຽກງານນີ້ |
ຄສບ 158/31 | ຮາກ Narcissus, ເນເທີແລນ | JF735276 100 | JF735394 100 | JF735724 99.3 | Cabral et al, 2012 |
ຄສບ 139/30 | ຫອຍນາງລົມ, ປະເທດເນເທີແລນ | JF735275 100 | JF735393 99.7 | JF735723 99.3 |
|
NSAC-SH-1 | Ginseng ຮາກ, ການາດາ | AY295311 99.4 | JF735395 100 | JF735 / 725 99.6 |
|
RHS235138 | ໃບໄມ້ຄຣີມ, ອັງກິດ | KJ475469 100 | KJ513266 100 | ND | Denton, Denton, 2014 |
MT294410 | ຮາກ Aspen, ການາດາ | MT294410 100 | ND | ND | Ramsfield et al, ປີ 2020 |
ER1937 | Beech, ອີຕາລີ | ຄລ 019363 99.65 | ND | ND | Tizzani, Haegi, Motta. ການຍື່ນສະເຫນີໂດຍກົງ |
KAUF19 | ຫົວມັນຕົ້ນ, Saudi Arabia | HE649390 98.3 | ND | ND | Gashgari, Gherbawy, ປີ 2013 |
ND = ບໍ່ຝາກ
ຕາຕະລາງ 2. ຄວາມຕ້ານທານຂອງ Ilyonectria crassa ກັບ fungicides
(ສານທີ່ໃຊ້ໄດ້) | EC50, ppm | ||||
3 day | 5 day | 7 day | |||
ການຄວບຄຸມ | 17 2 | 33 5 | 47 3 | ||
Quadris, KS (fsoxystrobin) | 18 1 | 34 2 | 48 2 | ||
11 1 | 11 1 | 12 1 | |||
11 1 | 11 1 | 12 1 | |||
Maxim, KS (fludioxonil) | 16 1 | 28 2 | 48 2 | ||
7 1 | 13 3 | 19 4 | |||
5 1 | 12 1 | 17 5 | |||
Skor, EC (difenoconazole) | 18 1 | 35 2 | 48 1 | ||
11 1 | 24 3 | 35 4 | |||
11 1 | 13 1 | 17 3 |
ໃນວຽກງານຂອງພວກເຮົາ, ສາຍພັນສາຍພັນ crassa ໄດ້ແຍກອອກຈາກຫົວມັນຕົ້ນໃນເຂດ Kostroma ແລະ Moscow (Chudinova et al., 2019). ອັດຕາສ່ວນສູງຂອງສາຍພັນຂອງເຫັດທີ່ມີລໍາດັບ ITS ທີ່ຄ້າຍຄືກັບ I. crassa ໄດ້ຖືກເປີດເຜີຍໃນເວລາທີ່ວິເຄາະ mycobiota ຂອງຫົວມັນຕົ້ນໃນປະເທດ Saudi Arabia (Gashgari and Gherbawy, 2013). ປາກົດຂື້ນ, I. crassa ບໍ່ແມ່ນສິ່ງທີ່ຫາຍາກໃນມັນຕົ້ນຍ້ອນວ່າມັນເບິ່ງຄືວ່າ. ການທົດລອງຂອງພວກເຮົາສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເຊື້ອເຫັດສາມາດຕິດເຊື້ອ ໝາກ ເລັ່ນທີ່ເສຍຫາຍ. ມັນແມ່ນເປັນທີ່ຮູ້ຈັກຈາກວັນນະຄະດີທີ່ I. crassa ມີຄວາມສາມາດໃນການພັດທະນາໃນດິນທີ່ປອດໄພ (Moll et al., 2016), ພ້ອມທັງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ພືດຫຼາຍໆຊະນິດ, ເຖິງແມ່ນວ່າບ່ອນທີ່ຢູ່ຫ່າງໄກຈາກພາສີເຊັ່ນ: daffodils, lilies, ginseng, aspen, ແລະ beech (ຕາຕະລາງ 1). ຫນຶ່ງ). ປາກົດຂື້ນ, ພືດປ່າແລະສວນຫລາຍແຫ່ງສາມາດເປັນສະຫງວນຂອງ I. crassa. ສິ່ງທີ່ກ່າວມາຂ້າງເທິງສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເມື່ອພັດທະນາມາດຕະການປ້ອງກັນ, ມັນ ຈຳ ເປັນຕ້ອງ ຄຳ ນຶງເຖິງຄວາມເປັນໄປໄດ້ທີ່ຈະສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຫົວມັນຕົ້ນດ້ວຍເຊື້ອເຫັດນີ້. ການກະກຽມຢ່າງແຜ່ຫຼາຍໃນການຮັກສາຫົວມັນຝະລັ່ງທີ່ບັນຈຸທາດ fludioxonil, azoxystrobin, ແລະ difenoconazole ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງປະສິດຕິພາບຂອງ fungicidal ສູງຕໍ່ກັບ I. crassa.
ວຽກງານນີ້ໄດ້ຮັບການສະ ໜັບ ສະ ໜູນ ຈາກມູນນິທິລັດເຊຍ ສຳ ລັບການຄົ້ນຄ້ວາພື້ນຖານ (ການຊ່ວຍເຫຼືອລ້າສະບັບເລກທີ 20-016-00139).
ບົດຂຽນຖືກລົງໃນວາລະສານ "ບົດຂ່າວປ້ອງກັນພືດ", ປີ 2020, 103 (3)